要判断样品是DNA还是RNA，较靠得住的做法是吓酌DNase、RNase别离处置样品，再观察核酸条带是否隐没或减弱
；有前提时，可用DNA、RNA显色试剂盒作交叉验证。尝试前要筹备起源和编号明显的核酸样品、酶和反映缓冲液、移液器、干净离心管，以及核酸电泳所需资料。尝试能判断样品中核酸的类型或混合情况，但单凭显色或条带不能证明样品来自哪个生物体，也不能核实供给起源。

先查对样品起源与尝试前提

纪录样品名称、取样或提取资料、提取日期、保留前提和处置步骤，并确认标签与尝试纪录一致。最好同时筹备已知DNA和已知RNA作为阳性对照，以及不加核酸的空缺对照。若待测物来自组织或细胞提取液，样品可能同时含有DNA和RNA
；直接观察提取液不能默认它只有一种核酸。

操作前将待测样品分装，使用干净、无核酸酶传染的枪头和离心管。处置RNA样品时尤其要预防RNase传染
；分歧酶处置组应分隔操作，预防交叉带入。若样品起源、保留或提取过程不明显，应把结论限造为“本次检测到的核酸类型”，不要据此揣度其生物学起源。

用DNase与RNase处置后观察电泳了局

1. 设置三组样品：将统一份待测核酸等量分入三支象征明显的离心管，别离作为未处置组、DNase处置组和RNase处置组。按所用酶的注明参与对应缓冲液和酶
   ；未处置组参与等量缓冲液，作为样品对照。
2. 实现酶消化：在酶说明书划定的温度和功夫下反映，常见核酸酶反映前提为37℃，但具体设置以试剂要求为准。若同时检测已知DNA、RNA对照，也按一样方式设置处置组，便于判断酶是否有效。
3. 进行电泳并比力：将三组样品与对照别离加到凝胶加样孔中，按尝试室电泳流程分离，再观察核酸信号。DNA样品通常在DNase处置后信号显著减弱或隐没、RNase处置后变动较
   ；RNA样品则通常对RNase更敏感。若两种酶处置后信号都削减，可能是DNA与RNA混合，也可能存在样品降解或操作传染，应结合对照复做。

判断实现的标志不是“看见一条带”就算成功，而是酶处置组与未处置组出现切合预期的差距，同时已知DNA、RNA对照出现相应变动。RNA容易降解，且分歧RNA分子的长度和结构差距较大，条带状态不能单独作为判定凭据。

用显色反映交叉确认

若尝试室配有核酸甄别试剂盒，可另取样品别离参与DNA显色试剂和RNA显色试剂，并同时设置空缺、已知DNA和已知RNA对照。按试剂盒指定的加样量、加热方式和反映功夫操作，不要把两种试剂加到统一管中。典型反映中，DNA显色常呈蓝色，RNA显色常呈绿色
；以对照组色彩和试剂注明判读。显色不显著、色彩与对照不符或空缺也变色时，了局不能直接定性，应查抄试剂、样品浓度和传染后沉做。

部门显色试剂涉及强酸和加热，只能在具备防护前提的尝试室操作，佩带护目镜和手套，并按尝试室规范处置废液
；不应在家自行配造或加热试剂。若没有相宜防护设施，应选取尝试室已有的安全检测规划，而不是省略防护步骤。

了局怎么判，哪些线索不能单独作证

较稳妥的判断是把酶敏感性、电泳了局和显色了局放在一路看：DNase处置后核酸信号显著降落且DNA显色对照一致，支持样品含DNA
；RNase处置后信号显著降落且RNA显色对照一致，支持样品含RNA
；两类处置都造成显著变动，则思考混合样品或尝试异常。紫表吸收峰值可用于估算核酸含量，但DNA和RNA都能在约260 nm处吸收，因而不能只凭这一项分辨二者。

最后，将样品编号、处置前提、对照了局和判读凭据一并纪录。尝试了局可能支持“样品含DNA、含RNA或两者混合”的判断
；要确认样品来自特定物种、组织或供给批次，还需依附相应的起源纪录或专门检测，不能把核酸类型甄别当成起源证明。